Preview

Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии

Расширенный поиск

Инфламмасомы — новый потенциальный биомаркер хронической сердечной недостаточности (обзор)

https://doi.org/10.20996/1819-6446-2026-3220

EDN: PXNUVM

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Цель обзора — провести анализ публикаций, посвященных исследованиям белков инфламмасомного профиля у больных с хронической сердечной недостаточностью (ХСН) в качестве потенциальных диагностических маркеров. Инфламмасомы представляют собой цитоплазматические высокомолекулярные белковые комплексы, активация которых приводит к развитию воспаления посредством высвобождаемых провоспалительных цитокинов. К наиболее изученным типам инфламмасом относят NLRP3-инфламмасомы, которые вовлечены в развитие системного и локального воспаления, в том числе в миокарде. В состав NLRP3-инфламмасомы входят рецепторный/сенсорный белок NLRP3 (nucleotide-binding leucine-rich repeat receptor pyrin domain-containing-3), адапторный белок ASC (apoptosis-associated speck-like protein containing CARD) и эффекторный белок — фермент каспаза-1. Рецепторный белок NLRP3, являясь структурным компонентом инфламмасомы NLRP3, выполняет функцию внутриклеточного паттерн-распознающего рецептора, который распознает патоген-ассоциированные молекулярные паттерны (pathogen-associated molecular patterns, PAMPs) и молекулярные сигналы опасности (danger-associated molecular patterns, DAMPs, молекулы поврежденных клеток). Активация данного рецептора приводит к сборке инфламмасом NLRP3, с последующим высвобождением интерлейкин-1β и интерлейкин-18. В обзоре приводятся данные о строении и классификации инфламмасомы NLRP3, рассмотрены пути ее активации, в том числе при ХСН, обсуждается роль инфламмасомы NLRP3 в патогенезе ХСН в сочетании с фибрилляцией предсердий, артериальной гипертонией, сахарным диабетом 2 типа и ожирением. Особое внимание в обзоре уделено анализу результатов исследований биомаркеров инфламмасомного профиля, возможности их количественного определения и применения с целью улучшения диагностики, прогнозирования и персонализации лечения ХСН. Накопленные данные клинических и экспериментальных исследований убедительно свидетельствуют о необходимости комплексного анализа белков инфламмасомного профиля у пациентов с ХСН.

Для цитирования:


Тимофеев Ю.С., Метельская В.А., Рахмонова Ш.М., Борисова А.Л., Джиоева О.Н., Драпкина О.М. Инфламмасомы — новый потенциальный биомаркер хронической сердечной недостаточности (обзор). Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии. 2026;22(1):52-59. https://doi.org/10.20996/1819-6446-2026-3220. EDN: PXNUVM

For citation:


Timofeev Yu.S., Metelskaya V.A., Rakhmonova Sh.M., Borisova A.L., Dzhioeva O.N., Drapkina O.M. Inflammasomes: a novel potential biomarker for chronic heart failure (review). Rational Pharmacotherapy in Cardiology. 2026;22(1):52-59. (In Russ.) https://doi.org/10.20996/1819-6446-2026-3220. EDN: PXNUVM

Введение

Хроническая сердечная недостаточность (ХСН) является конечной стадией большинства сердечно-сосудистых заболеваний. В структуре сердечной недостаточности >70% от всех случаев составляет ХСН с сохраненной фракцией выброса (ХСНсФВ). В популяции среди лиц >60 лет встречаемость этой патологии составляет 4,9% [1]. В Российской Федерации частота данной патологии в течение 20-летнего наблюдения с 1998 по 2017 гг. увеличилась с 6,1 до 8,2% [2]. Прогнозируется, что с учетом увеличения продолжительности жизни, возрастанием распространенности ожирения и сахарного диабета 2 типа (СД-2), частота выявления ХСНсФВ будет расти.

Диагноз ХСНсФВ не всегда однозначен — несмотря на использование в клинической практике европейского (HFA-PEFF — Heart Failure Association Pre-test assessment, Echocardiography and natriuretic peptide, Functional testing, Final etiology) и американского (H2FPEF — Heavy, Hypertensive, Atrial fibrillation, Pulmonary hypertension, Elder, Filling pressure) алгоритмов диагностики ХСНсФВ, объединяющих в себе клинические, эхокардиографические критерии и биохимический маркер N-концевой промозговой натрийуретический пептид, трудности в установлении диагноза сохраняются. Это может быть связано с не всегда полноценной оценкой всех необходимых параметров эхокардиографии врачами функциональной диагностики, неспецифичностью клинических признаков (слабость — 59%, отеки нижних конечностей — 45%, ортопноэ — 22%, расширение яремных вен — 17%, мелкопузырчатые хрипы при аускультации легких — 11% и т.д.) [3], а также с относительно низкой отрицательной прогностической ценностью натрийуретических пептидов при ХСНсФВ [4], особенно у пациентов с ожирением и/или нарушением функции почек. Очевидно, что для уточнения диагноза требуется комплексная оценка клинико-инструментальных и лабораторных параметров.

ХСНсФВ — это гетерогенное заболевание, часто ассоциирующееся с фибрилляцией предсердий (ФП), артериальной гипертонией (АГ), СД-2 и ожирением, пожилым возрастом, женским полом [5]. При сосуществовании вышеупомянутых заболеваний с ХСНсФВ есть общий фактор в виде хронического низкоинтенсивного воспаления, которое запускает и сопровождает непрерывную цепь взаимосвязанных изменений в сердечно-сосудистой системе, приводящих к развитию ХСН. В пользу этого свидетельствует повышение уровня провоспалительных цитокинов при ХСН, таких как фактор некроза опухоли-α (ФНО-α), интерлейкин (ИЛ)-1, ИЛ-6, а также С-реактивный белок, причем уровень этих соединений в крови прямо коррелирует с тяжестью ХСН [6].

В последние годы наряду с вышеперечисленными провоспалительными цитокинами внимание исследователей привлекает NLRP3-инфламмасома (nucleotide-binding leucine-rich repeat receptor pyrin domain-containing-3) — цитоплазматический высокомолекулярный белковый комплекс, активация которого сопровождается продукцией активных провоспалительных цитокинов — ИЛ-1β, ИЛ-18 и приводит к развитию воспаления [7].

Цель обзора — провести анализ публикаций, посвященных биохимическим исследованиям белков инфламмасомного профиля у больных с ХСН в качестве потенциальных диагностических маркеров.

Методология исследования

Проведен поиск и анализ источников в базах данных PubMed, Google Scholar, eLIBRARY по ключевым словам: «хроническая сердечная недостаточность, ХСН» (heart failure, HF), «сердечная недостаточность с сохраненной фракцией выброса, ХСНсФВ» (heart failure with preserved ejection fraction, HFpEF), «инфламмасома NLRP3» (inflammasome NLRP3). Проводился поиск по каждому биологическому маркеру инфламмасомного профиля: «интерлейкин-1β, ИЛ-1β» (Interleukin-1β, IL-1β), «интерлейкин-18, ИЛ-18» (Interleukin-18, IL-18), «каспаза-1» (Caspase-1). Глубина поиска для зарубежных и отечественных работ составила 24 года, с 2000 по 2024 гг. Таким образом, в обзор включено 52 источника, содержащие данные актуальных экспериментальных, лабораторных, оригинальных клинических исследований и систематических обзоров. Настоящий обзор является нарративным и не соответствует критериям PRISMA.

Результаты

Биохимические особенности инфламмасомы NLRP3

NLRP3-инфламмасома состоит из трех компонентов: это рецепторный белок NLRP3 (NOD-, LRR- и pyrin domain-containing protein 3), адапторный белок ASC (apoptosis-associated speck-like protein containing CARD) и эффекторный белок — фермент каспаза-1. Строение инфламмасомы NLRP3 представлено на рис.

Рисунок. Строение инфламмасомы NLRP3.

Рецепторный паттерн-распознающий белок NLRP3 содержит 3 домена: NACHT (нуклеотид-связывающий и олигомеризующий домен); LRR (богатый лейциновыми повторами домен); PYD (пириновый домен). Адапторный белок ASC включает в себя 2 взаимодействующих субдомена PYD и CARD. Паттерн-распознающие рецепторы (PRR, pattern recognition receptors) играют ключевую роль в формировании инфламмасом [8]. Все перечисленные белки находятся в цитоплазме в неактивной форме до тех пор, пока не подвергнутся воздействию триггерных факторов. Их активация сопровождается конформационными изменениями и способствует инициации сборки инфламмасом [9]. При запуске сборки инфламмасомы PYD-домен паттерн-распознающего рецептора NLRP3 взаимодействует с PYD-доменом адапторного белка ASC, в то время как CARD-домен адапторного белка ASC взаимодействует с CARD-доменом эффекторного белка каспазы-1. Следовательно, адапторный белок ASC является «мостом», связывающим паттерн-распознающий рецептор NLRP3 и эффекторный белок каспазу-1 [10].

На мембране лейкоцитов наблюдается широкая экспрессия Toll-подобных рецепторов, активация которых приводит к фосфорилированию и лизису ингибитора ядерного фактора транскрипции NF-κB и высвобождению активной молекулы NF-κB. В свою очередь, NF-κB проникает в ядро клетки и запускает транскрипцию предшественников ИЛ (про-ИЛ-1β, про-ИЛ-18) и NLRP3 [11]. Запускается сборка инфламмасомы NLRP3, при этом входящая в ее состав каспаза-1 осуществляет гидролиз про-ИЛ-1β и про-ИЛ-18 и их трансформацию в зрелые формы ИЛ-1β и ИЛ-18 [12]. Примечательно, что сборка инфламмасом NLRP3 происходит не только в лейкоцитах, но и в клетках сердечно-сосудистой системы: эндотелиальных клетках, гладкомышечных клетках сосудов и в кардиомиоцитах [8].

Существует ряд эндогенных стимулирующих факторов, способствующих экспрессии белков, входящих в комплекс инфламмасомы NLRP3, среди которых можно выделить: изменения внутриклеточной концентрации ионов (К+ и Ca²+), активные формы кислорода (АФК) и молекулы поврежденных клеточных органелл.

Изменения внутриклеточной концентрации ионов

Было обнаружено, что снижение внутриклеточной концентрации ионов К+ приводит к созреванию и высвобождению ИЛ-1β [13]. Блокада К+ оттока посредством увеличения его внеклеточной концентрации способствует подавлению активации NLRP3 инфламмасомы; наряду с этим снижение внутриклеточной концентрации К+ активирует сборку инфламмасомы NLRP3. Активация инфламмасом NLRP3 может осуществляться и посредством взаимодействия молекулы аденозинтрифосфата с пуринергическими рецепторами (P2X7R), стимуляция которых сопровождается оттоком ионов К+, способствующим активации инфламмасомы NLRP3 [14]. Ионы Ca²+ также участвуют в различных межклеточных взаимодействиях, тесно ассоциированных с активацией NLRP3 инфламмасом. Так, было показано, что хелатирование Са²+ с помощью кальциевого хелатора-BAPTA-AМ подавляет секрецию ИЛ-1β, что может быть связано с вовлеченностью ионов Са²+ в процесс активации инфламмасомы NLRP3 [15]. В более поздней работе было продемонстрировано, что подавление Са²+-чувствительных рецепторов сопровождается снижением активности инфламмасомы NLRP3 [16].

Активные формы кислорода в активации инфламмасом

Известно, что АФК являются побочными продуктами различных аэробных метаболических процессов. Источником АФК, в частности, служит мембранный ферментный комплекс − НАДФН (никотинамид динуклеотид фосфат восстановленный)-оксидаза (NOX), однако данные о его взаимосвязи с инфламмасомой NLRP3 противоречивы. Так, в работе Z. Zhong и соавт. было показано, что ингибирование NOX не влияет на активацию NLRP3 инфламмасомы в человеческих и мышиных клетках [17], тогда как в исследовании M. W. Ma и соавт. ингибирование NOX2 способствовало активации инфламмасомы NLRP3 на мышиных моделях ишемического инсульта головного мозга [18]. В другом исследовании также было показано, что ингибиторы продукции АФК могут блокировать активацию NLRP3 инфламмасомы [19]. Таким образом, есть свидетельства о вовлеченности АФК в процесс активации NLRP3 инфламмасомы, однако понимание механизмов этого процесса требует дальнейших исследований [20].

Интерес представляют и данные о связи инфламмасом с митохондриальной дисфункцией. При ингибировании одного из звеньев митохондриальной дыхательной цепи переноса электронов кислород, который является их конечным акцептором, может аккумулироваться в виде митохондриальных АФК (мтАФК). K. Nakahira и соавт. показали, что мтАФК необходимы для активации NLRP3 в ответ на стимуляцию посредством аденозинтрифосфата на мышиных моделях сепсиса. Так, у мышей без митохондриального протективного белка обнаруживали более высокую концентрацию мтАФК и более высокую секрецию ИЛ-1β и ИЛ-18 [21]. Другим следствием митохондриальной дисфункции является высвобождение митохондриальной ДНК (мтДНК) в цитоплазму с ее последующим свободно-радикальным окислением. Окисленная мтДНК способна связываться с инфламмасомой NLRP3 и активировать ее [22]. Позже было доказано, что синтез мтДНК индуцируется через TLR-сигнальный путь, который играет важную роль в активации инфламмасом [23].

Молекулы повреждённых клеточных органелл, захваченные макрофагами в результате фагоцитоза, которые не могут быть разрушены лизосомальными ферментами, вызывают разрыв лизосомальной мембраны и выход содержимого лизосом в цитоплазму, что способствует активации NLRP3 инфламмасомы [24]. Высвобождение активных лизосомальных ферментов является значимым в процессе активации NLRP3 инфламмасомы. Одним из важнейших лизосомальных ферментов является катепсин В; имеются данные о том, что его секреция необходима для высвобождения ИЛ-1β, но не влияет на продукцию неактивного предшественника про-ИЛ-1β. Дальнейшие исследования различных катепсинов, таких как L, C, S и Х продемонстрировали схожие результаты [25].

Помимо высвобождения провоспалительных цитокинов ИЛ-1β и ИЛ-18, активация инфламмасом может приводить к каспаза-1-зависимому пироптозу — разновидности запрограммированной гибели клетки, характеризующейся формированием пор в цитоплазматической мембране и осмотическим лизисом с выходом содержимого клетки во внеклеточное пространство [26].

Значение инфламмасомы NLRP3 при ХСН

Значение белков инфламмасом при ХСН изучалось в ряде экспериментальных исследований (табл.). Механизм развития ХСН тесно связан с ремоделированием миокарда, в реализации которого важную роль играют провоспалительные цитокины [27]. Ключевыми процессами, приводящими к ремоделированию миокарда, являются: повреждение миокарда вследствие пироптоза кардиомиоцитов и активация сердечных фибробластов. В эксперименте показано, что у мышей с ХСН обнаруживаются гиперацетилированные митохондрии, повышенная активность NLRP3 инфламмасомы, а также избыточное образование ИЛ-1β и ИЛ-18 [28]. В литературе описана связь ФНО-α и инфламмасомы NLRP3 при ХСН [29][30]. В интактном миокарде ФНО-α не обнаруживается, однако в кардиомиоцитах животных моделей ХСН ФНО-α снижал сократимость сердца за счет подавления внутриклеточного высвобождения Ca²+. В свою очередь, ИЛ-18, который высвобождается в процессе активации инфламмасомы NLRP3, способствует выработке ФНО-α. Помимо этого ФНО-α может запускать ядерный путь NF-κB, что приводит к активации транскрипции белков инфламмасомы NLRP3 и ИЛ-1. Таким образом, имеет место перекрестное взаимодействие, которое усугубляет воспалительное повреждение ткани миокарда [31][32]. Примечательно, что на мышиных моделях синдрома ишемии — реперфузии миокарда, инфламмасомы были активированы в фибробластах, но не в кардиомиоцитах, при этом наблюдалась гиперпродукция АФК и ИЛ-1β; это позволяет предполагать, что активация инфламмасом в сердечных фибробластах происходит за счет АФК [31]. Согласно данным экспериментальных исследований, кардиомиоциты при ХСН подвержены патологическому воздействию АФК, которые индуцируют активацию инфламмасом с последующим высвобождением провоспалительных цитокинов из этих клеток. Помимо этого, инфламмасомы могут напрямую транспортироваться в соседние клетки через находящиеся в мембране туннелирующие нанотрубки (TNT — tunneling nanotubes) или TNT-подобные структуры (TNTL — tunneling nanotubes like), однако точный механизм такой транспортировки неизвестен [33].

Таблица. Результаты исследований белков инфламмасомы NLRP3 при ХСН и ассоциированных состояниях

Автор, год

Объект, материал исследования

Нозология

Результаты исследования

Ссылка

Bracey NA, et al, 2013

Мыши, сердечная ткань, сыворотка

ХСН

Мыши с индуцированной ХСН были разделены на две подгруппы, с делецией гена NLRP3(−/−) и без делеции. В миокарде мышей с NLRP3(−/−) наблюдалось уменьшение инфильтрации мононуклеарными клетками.

В сыворотке крови мышей с NLRP3(−/−) выявлено значительное снижение уровня ИЛ-1β по сравнению с мышами без делеции гена NLRP3. Также была снижена активность прокаспазы-1 в миокарде мышей с NLRP3(−/−).

[30]

Kawaguchi M, et al, 2011

Мыши, сердечная ткань

ИБС

У мышей с синдромом ишемии-реперфузии, лишенных ключевых компонентов инфламмасом (ASC-белка и каспазы-1), воспалительные реакции и связанные с ними повреждения, включая инфаркт миокарда, фиброз и нарушение функции миокарда, были существенно ниже, что также отражалось низкой активностью ИЛ-1β в миокарде.

[31]

Gan W, et al, 2018

Мыши, сердечная ткань

АГ

На модели мышей, которым была индуцирована гипертония посредством инфузии АТ II, было обнаружено, что введение EMD638683 − высокоселективного ингибитора NLRP3 инфламмасомы, подавляло фиброз и ремоделирование миокарда, а также значительно уменьшало воспаление в миокарде за счет уменьшения активности ИЛ-1β и существенного снижения экспрессии белка NLRP3 в миокарде.

[42]

Xie Y, et al, 2020.

Мыши, сердечная ткань

СД-2

У мышей с диабетической кардиомиопатией наблюдалось усиление экспрессии NLRP3, прокаспазы-1, активной каспазы-1 и зрелого ИЛ-1β. Их миокард характеризовался фиброзом, гипертрофией и структурно-функциональными нарушениями. Подавление экспрессии NLRP3 приводило к уменьшению уровней активной каспазы-1, ИЛ-1β и пироптоза.

[46]

Scott LJr, et al, 2021

Человек и животные модели, сердечная ткань

ФП

Ожирение

У людей с ожирением и экспериментальных животных с ожирением (диет-индуцированные модели ожирения мышей и овец) наблюдалась повышенная активность NLRP3 инфламмасомы в тканях предсердий, которая коррелировала с увеличением массы тела. Данные результаты демонстрируют, что инфламмасома NLRP3 является возможным фактором предсердного аритмогенеза, индуцированного ожирением, и устанавливают связь между ФП, вызванной ожирением, и активацией NLRP3-инфламмасомы.

[51]

ХСН — хроническая сердечная недостаточность, ИБС — ишемическая болезнь сердца, АГ — артериальная гипертензия, СД-2 — сахарный диабет 2 типа, ФП — фибрилляция предсердий, NLRP3 — nucleotide-binding leucine-rich repeat receptor pyrin domain-containing-3, ИЛ-1β — интерлейкин-1β, ASC − apoptosis-associated speck-like protein containing CARD, апоптоз-ассоциированный speck-подобный белок, содержащий C-концевой домен активации и рекрутирования каспаз (CARD), АТ II — ангиотензин II

ХСН и ФП часто сосуществуют, частота выявления ФП при ХСН составляет 40-60% [34]. По данным C. Dye и соавт. у пациентов с ХСН ФП наблюдалась более чем у 50% исследуемых [5]. Одной из гипотез взаимосвязи между ХСНсФВ и ФП является наличие общих факторов, влияющих на миокард предсердий и желудочков; к ним относятся ишемия, воспаление или воспалительная инфильтрация миокарда [5]. Вялотекущее/низкоинтенсивное воспаление является общим фактором для ХСН и ФП. Хроническое вялотекущее воспаление индуцирует выработку АФК и цитокинов, что провоцирует в миокарде предсердий фиброз, гипертрофию и апоптоз, лежащие в основе развития ФП [35]. В результате воспаления увеличивается проницаемость эндотелия сосудов миокарда предсердий, что вызывает миграцию иммунных клеток в ткани предсердий [36]. Анализ образцов тканей правого и левого предсердий 46 пациентов с ФП, перенесших операцию на клапанах сердца или коронарное шунтирование, показал, что количество иммунных клеток было повышено в левом предсердии пациентов с ритмом ФП по сравнению с пациентами, у которых был синусовый ритм [37]. Иммунные клетки, инфильтрирующие предсердия, выделяют провоспалительные цитокины, которые способствуют дисфункции кардиомиоцитов. В ряде исследований описано, что при ФП имеет место повреждение кардиомиоцитов и активация внутриклеточных иммунных процессов, включая сборку инфламмасомы NLRP3 с последующей продукцией ИЛ-1β и ИЛ-18 [38][39]. Таким образом, в результате цитокинового перекрестного взаимодействия между сердечными фибробластами, иммунными клетками и кардиомиоцитами происходит ремоделирование предсердий, являющееся непосредственным субстратом для ФП.

Еще одним фактором, ассоциированным с ХСН, является АГ, в патогенезе которой хроническое воспаление рассматривается как один из пусковых механизмов. В одном из обсервационных исследований у пациентов с АГ были обнаружены повышенные уровни ИЛ-1β, что послужило толчком к изучению потенциальной роли инфламмасомы NLRP3 [40]. K. Shirasuna и соавт. на модели беременных мышей с отсутствием гена, кодирующего экспрессию белка NLRP3 и ASC (-/-), индуцировали преэклампсию посредством инъекции ангиотензина II (АТ II). У мышей линии NLRP3-/- АГ была предотвращена, в то время как у мышей линии ASC-/- значительного снижения артериального давления не наблюдалось. Эти результаты служат экспериментальным свидетельством наличия связи инфламмасомы NLRP3 с развитием АГ [41]. В другом экспериментальном исследовании на мышах инфузия АТ II сопровождалась активацией NLRP3 инфламмасомы и секрецией цитокинов, приводящих к воспалительному процессу в миокарде с последующим миокардиальным фиброзом. Примечательно, что применение соединения EMD638683, высокоселективного ингибитора, подавляющего активность NLRP3 инфламмасомы, приводило к снижению миокардиального фиброза у линии мышей с АТ II-индуцированной АГ [42].

СД-2 нередко сопутствует ХСН, являясь ее независимым фактором риска, увеличивает вероятность ее возникновения в 2-4 раза [43]. В ряде исследований было показано, что гипергликемия и гиперлипидемия могут способствовать увеличению экспрессии АФК [44], что приводит к активации пути NF-κB и способствует транскрипции NLRP3, про-ИЛ-1β и про-ИЛ-18 [45]. В экспериментальном исследовании Y. Xie и соавт. на мышиных моделях СД-2 в биоптатах сердечной ткани наблюдалась повышенная экспрессия белка NLRP3. В результате повышенной активности инфламмасомы NLRP3 в сердечной ткани развивается воспаление миокарда с дальнейшим его ремоделированием, что лежит в основе развития диабетической кардиомиопатии с последующим прогрессированием до ХСН [46].

Сочетание ХСН и ожирения широко распространено во всем мире. Для людей с избыточным весом характерны более высокая тяжесть, распространенность и частота ХСН по сравнению с лицами с нормальным весом [47]. Известно, что при ожирении уровень провоспалительных цитокинов повышен как в кровотоке, так и в тканях. Кроме того, наличие эпикардиальной жировой ткани в избыточном количестве, как компонента висцерального ожирения, дополнительно способствует развитию хронического вялотекущего воспаления с участием провоспалительных цитокинов, способствуя как локальному, так и системному воспалению [48][49]. Патофизиологическая связь между ожирением и ХСН объясняется, в основном, нарушением электрической проводимости сердца и структурным ремоделированием, вызванным ожирением [50]. В исследовании L. Jr. Scott и соавт. с использованием образцов тканей предсердий людей с ожирением и экспериментальных животных с ожирением (диет-индуцированные модели ожирения мышей и овец) наблюдалась повышенная активность NLRP3 инфламмасомы в тканях предсердий, которая коррелировала с увеличением массы тела [51].

В связи с анатомическими особенностями расположения эпикардиальной жировой ткани, непосредственно контактирующей с миокардом, а также с общим источником кровоснабжения, инфламмасомы NLRP3 из эпикардиальной жировой ткани способны поступать в миокард и локально высвобождать транспортируемые цитокины, приводя к индуцированию/усилению воспаления, утяжеляющего течение ХСН [52].

Заключение

Установление диагноза и эффективное лечение ХСНсФВ остаются нерешенной проблемой в кардиологии, что определяет целесообразность проведения научных исследований, направленных на обнаружение дополнительных диагностических маркеров заболевания и его осложнений. Современные исследования ХСН активно фокусируются на биомаркерах, в том числе на биомаркерах инфламмасомного профиля. Накопленные данные клинических и экспериментальных исследований убедительно свидетельствуют о необходимости комплексного анализа белков инфламмасомного профиля для понимания путей развития ХСН. Это связано с тем, что ХСН — это гетерогенное заболевание с различными этиологическими факторами и механизмами развития. Очевидно, что один единственный маркер не способен адекватно отразить полноценную картину, именно поэтому мультимаркерный подход, включающий одновременное определение нескольких белков инфламмасомного профиля, представляет собой значительный шаг вперед в понимании патогенеза ХСН. Дальнейшие исследования нацелены на установление оптимальных комбинаций белков инфламмасомного профиля и определение пороговых значений для каждого биомаркера и их сочетаний. Это позволит создать более чувствительные и специфичные диагностические и прогностические инструменты, которые дополнят существующие клинические и инструментальные методы диагностики. Разработка алгоритмов, использующих мультимаркерный анализ белков инфламмасомного профиля, позволит предложить новые стратегии раннего выявления и лечения ХСН.

Отношения и Деятельность. Исследование проводилось в рамках государственного задания «Разработка информационно-аналитической системы для прогнозирования и улучшения исходов путем оптимизации подходов к ведению пациентов с декомпенсированной сердечной недостаточностью с сохраненной фракцией выброса с использованием мультимаркерной стратегии и методов искусственного интеллекта» (2025-2027 гг., регистрационный номер И125011901994-4).

Relationships and Activities. The study was conducted as part of the state-funded project titled “Development of an information-analytical system for predicting and improving outcomes through optimization of management approaches for patients with decompensated heart failure with preserved ejection fraction using a multimarker strategy and artificial intelligence methods” (2025–2027, registration number И125011901994-4).

Список литературы

1. van Riet EE, Hoes AW, Wagenaar KP, et al. Epidemiology of heart failure: the prevalence of heart failure and ventricular dysfunction in older adults over time. A systematic review. Eur J Heart Fail. 2016;18(3):242-52. DOI: 10.1002/ejhf.483.

2. Поляков Д.С., Фомин И.В., Беленков Ю.Н. и др. Хроническая сердечная недостаточность в Российской Федерации: что изменилось за 20 лет наблюдения? Результаты исследования ЭПОХА–ХСН. Кардиология. 2021;61(4):4-14. DOI: 10.18087/cardio.2021.4.n1628.

3. Solomon SD, Rizkala AR, Lefkowitz MP, et al. Baseline characteristics of patients with heart failure and preserved ejection fraction in the PARAGON-HF trial. Circ Heart Fail. 2018;11(7):e004962. DOI: 10.1161/CIRCHEARTFAILURE.118.004962.

4. Buckley LF, Canada JM, Del Buono MG, et al. Low NT‐proBNP levels in overweight and obese patients do not rule out a diagnosis of heart failure with preserved ejection fraction. ESC Heart Fail. 2018;5(2):372-8. DOI: 10.1002/ehf2.12235.

5. Dye C, Cruz MD, Larsen T, et al. A review of the impact, pathophysiology, and management of atrial fibrillation in patients with heart failure with preserved ejection fraction. Am Heart J Plus. 2023;33:100309. DOI: 10.1016/j.ahjo.2023.100309.

6. Wu J, Dong E, Zhang Y, Xiao H. The Role of the Inflammasome in Heart Failure. Front Physiol. 2021;12:709703. DOI: 10.3389/fphys.2021.709703.

7. Mathur A, Hayward JA, Man SM. Molecular mechanisms of inflammasome signaling. J Leukoc Biol. 2018;103(2):233-57. DOI: 10.1189/jlb.3MR0617-250R.

8. Próchnicki T, Mangan MS, Latz E. Recent insights into the molecular mechanisms of the NLRP3 inflammasome activation. F1000Res. 2016;5:F1000-Faculty. DOI: 10.12688/f1000research.8614.1.

9. Latz E, Xiao TS, Stutz A. Activation and regulation of the inflammasomes. Nat Rev Immunol. 2013;13(6):397-411. DOI: 10.1038/nri3452.

10. Broz P, Dixit VM. Inflammasomes: mechanism of assembly, regulation and signalling. Nat Rev Immunol. 2016;16(7):407-20. DOI: 10.1038/nri.2016.58.

11. Bauernfeind FG, Horvath G, Stutz A, et al. Cutting edge: NF-kappaB activating pattern recognition and cytokine receptors license NLRP3 inflammasome activation by regulating NLRP3 expression. J Immunol. 2009;183(2):787-91. DOI: 10.4049/jimmunol.0901363.

12. Toldo S, Mauro AG, Cutter Z, et al. The NLRP3 inflammasome inhibitor, OLT1177 (dapansutrile), reduces infarct size and preserves contractile function after ischemia reperfusion injury in the mouse. J Cardiovasc Pharmacol. 2019;73(4):215-22. DOI: 10.1097/FJC.0000000000000658.

13. Walev I, Klein J, Husmann M, et al. Potassium regulates IL-1β processing via calcium-independent phospholipase A2. J Immunol. 2000;164(10):5120-4. DOI: 10.4049/jimmunol.164.10.5120.

14. Schmid‐Burgk JL, Gaidt MM, Schmidt T, et al. Caspase‐4 mediates non‐canonical activation of the NLRP3 inflammasome in human myeloid cells. Eur J Immunol. 2015;45(10):2911-7. DOI: 10.1002/eji.201545523.

15. Brough D, Le Feuvre RA, Wheeler RD, et al. Ca2+ stores and Ca2+ entry differentially contribute to the release of IL-1β and IL-1α from murine macrophages. J Immunol. 2003;170(6):3029-36. DOI: 10.4049/jimmunol.170.6.3029.

16. Lee GS, Subramanian N, Kim AI, et al. The calcium-sensing receptor regulates the NLRP3 inflammasome through Ca2+ and cAMP. Nature. 2012;492(7427):123-27. DOI: 10.1038/nature11588.

17. Zhong Z, Zhai Y, Liang S, et al. TRPM2 links oxidative stress to NLRP3 inflammasome activation. Nat Commun. 2013;4(1):1611. DOI: 10.1038/ncomms2608.

18. Ma MW, Wang J, Dhandapani KM, Brann DW. NADPH oxidase 2 regulates NLRP3 inflammasome activation in the brain after traumatic brain injury. Oxid Med Cell Longev. 2017;2017(1):6057609. DOI: 10.1155/2017/6057609.

19. Bauernfeind F, Bartok E, Rieger A, et al. Cutting edge: reactive oxygen species inhibitors block priming, but not activation, of the NLRP3 inflammasome. J Immunol. 2011;187(2):613-7. DOI: 10.4049/jimmunol.1100613.

20. Zheng Y, Xu L, Dong N, Li F. NLRP3 inflammasome: The rising star in cardiovascular diseases. Front Cardiovasc Med. 2022;9:927061. DOI: 10.3389/fcvm.2022.927061.

21. Nakahira K, Haspel JA, Rathinam VA, et al. Autophagy proteins regulate innate immune responses by inhibiting the release of mitochondrial DNA mediated by the NALP3 inflammasome. Nat Immunol. 2011;12(3):222-30. DOI: 10.1038/ni.1980.

22. Shimada K, Crother TR, Karlin J, et al. Oxidized mitochondrial DNA activates the NLRP3 inflammasome during apoptosis. Immunity. 2012;36(3):401-14. DOI: 10.1016/j.immuni.2012.01.009.

23. Zhong Z, Liang S, Sanchez-Lopez E, et al. New mitochondrial DNA synthesis enables NLRP3 inflammasome activation. Nature. 2018;560(7717):198-203. DOI: 10.1038/s41586-018-0372-z.

24. Duewell P, Kono H, Rayner KJ, et al. NLRP3 inflammasomes are required for atherogenesis and activated by cholesterol crystals. Nature. 2010;464(7293):1357-61. DOI: 10.1038/nature08938.

25. Orlowski GM, Colbert JD, Sharma S, et al. Correction: Multiple Cathepsins Promote Pro-IL-1β Synthesis and NLRP3-Mediated IL-1β Activation. J Immunol. 2016;196(1):503. DOI: 10.4049/jimmunol.1502363. Erratum for: J Immunol. 2015;195(4):1685-97. DOI: 10.4049/jimmunol.1500509.

26. Miao EA, Rajan JV, Aderem A. Caspase‐1‐induced pyroptotic cell death. Immunol Rev. 2011;243(1):206-14. DOI: 10.1111/j.1600-065X.2011.01044.x.

27. von Haehling S, Schefold JC, Lainscak M, et al. Inflammatory biomarkers in heart failure revisited: much more than innocent bystanders. Heart Fail Clin. 2009;5(4):549-60. DOI: 10.1016/j.hfc.2009.04.001.

28. Deng Y, Xie M, Li Q, et al. Targeting mitochondria-inflammation circuit by β-hydroxybutyrate mitigates HFpEF. Circ Res. 2021;128(2):232-45. DOI: 10.1161/CIRCRESAHA.120.317933.

29. Butts B, Gary RA, Dunbar SB, Butler J. The importance of NLRP3 inflammasome in heart failure. J Card Fail. 2015;21(7):586-93. DOI: 10.1016/j.cardfail.2015.04.014.

30. Bracey NA, Beck PL, Muruve DA, et al. The Nlrp3 inflammasome promotes myocardial dysfunction in structural cardiomyopathy through interleukin-1β. Exp Physiol. 2013;98(2):462-72. DOI: 10.1113/expphysiol.2012.068338.

31. Kawaguchi M, Takahashi M, Hata T, et al. Inflammasome activation of cardiac fibroblasts is essential for myocardial ischemia/reperfusion injury. Circulation. 2011;123(6):594-604. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.110.982777.

32. Burkard T, Pfister O, Rickli H, et al.; Time-CHF Investigators. Prognostic impact of systemic inflammatory diseases in elderly patients with congestive heart failure. QJM. 2014;107(2):131-8. DOI: 10.1093/qjmed/hct205.

33. Shen J, Wu JM, Hu GM, et al. Membrane nanotubes facilitate the propagation of inflammatory injury in the heart upon overactivation of the β-adrenergic receptor. Cell Death Dis. 2020;11(11):958. DOI: 10.1038/s41419-020-03157-7.

34. Zafrir B, Lund LH, Laroche C, et al.; ESC-HFA HF Long-Term Registry Investigators. Prognostic implications of atrial fibrillation in heart failure with reduced, mid-range, and preserved ejection fraction: a report from 14 964 patients in the European Society of Cardiology Heart Failure Long-Term Registry. Eur Heart J. 2018;39(48):4277-84. DOI: 10.1093/eurheartj/ehy626.

35. Yeh YH, Kuo CT, Chang GJ, et al. Nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase 4 mediates the differential responsiveness of atrial versus ventricular fibroblasts to transforming growth factor-β. Circ Arrhythm Electrophysiol. 2013;6(4):790-8. DOI: 10.1161/CIRCEP.113.000338.

36. Yamashita T, Sekiguchi A, Iwasaki YK, et al. Recruitment of immune cells across atrial endocardium in human atrial fibrillation. Circ J. 2010;74(2):262-70. DOI: 10.1253/circj.cj-09-0644.

37. Smorodinova N, Blaha M, Melenovský V, et al. Analysis of immune cell populations in atrial myocardium of patients with atrial fibrillation or sinus rhythm. PLoS One. 2017;12(2):e0172691. DOI: 10.1371/journal.pone.0172691.

38. Gungor B, Ekmekci A, Arman A, et al. Assessment of interleukin-1 gene cluster polymorphisms in lone atrial fibrillation: new insight into the role of inflammation in atrial fibrillation. Pacing Clin Electrophysiol. 2013;36(10):1220-7. DOI: 10.1111/pace.12182.

39. Nattel S, Sager PT, Hueser J, et al. Why translation from basic discoveries to clinical applications is so difficult for atrial fibrillation and possible approaches to improving it. Cardiovasc Res. 2021;117(7):1616-31. DOI: 10.1093/cvr/cvab093.

40. Ye J, Ji Q, Liu J, et al. Interleukin 22 promotes blood pressure elevation and endothelial dysfunction in angiotensin II–treated mice. J Am Heart Assoc. 2017;6(10):e005875. DOI: 10.1161/JAHA.117.005875.

41. Shirasuna K, Karasawa T, Usui F, et al. NLRP3 deficiency improves angiotensin II-induced hypertension but not fetal growth restriction during pregnancy. Endocrinology. 2015;156(11):4281-92. DOI: 10.1210/en.2015-1408.

42. Gan W, Ren J, Li T, et al. The SGK1 inhibitor EMD638683, prevents Angiotensin II–induced cardiac inflammation and fibrosis by blocking NLRP3 inflammasome activation. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2018;1864(1):1-10. DOI: 10.1016/j.bbadis.2017.10.001.

43. Boonman-de Winter LJM, Rutten FH, Cramer MJM, et al. High prevalence of previously unknown heart failure and left ventricular dysfunction in patients with type 2 diabetes. Diabetologia. 2012;55:2154-62. DOI: 10.1007/s00125-012-2579-0.

44. Bryant C, Fitzgerald KA. Molecular mechanisms involved in inflammasome activation. Trends Cell Biol. 2009;19(9):455-64. DOI: 10.1016/j.tcb.2009.06.002.

45. Minutoli L, Puzzolo D, Rinaldi M, et al. ROS‐mediated NLRP3 inflammasome activation in brain, heart, kidney, and testis ischemia/reperfusion injury. Oxid Med Cell Longev. 2016;2016(1):2183026. DOI: 10.1155/2016/2183026.

46. Xie Y, Huang Y, Ling X, et al. Chemerin/CMKLR1 Axis Promotes Inflammation and Pyroptosis by Activating NLRP3 Inflammasome in Diabetic Cardiomyopathy Rat. Front Physiol. 2020;23;11:381. DOI: 10.3389/fphys.2020.00381.

47. Nalliah CJ, Sanders P, Kottkamp H, Kalman JM. The role of obesity in atrial fibrillation. Eur Heart J. 2016;37(20):1565-72. DOI: 10.1093/eurheartj/ehv486.

48. Aldiss P, Davies G, Woods R, et al. ‘Browning’ the cardiac and peri-vascular adipose tissues to modulate cardiovascular risk. Int J Cardiol. 2017;228:265-74. DOI: 10.1016/j.ijcard.2016.11.074.

49. Тимофеев Ю.С., Джиоева О.Н., Драпкина О.М. Циркулирующие биологические маркеры ожирения: на пути к системному подходу. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2023;22(4):3551. DOI: 10.15829/1728-8800-2023-3551.

50. Mahajan R, Lau DH, Brooks AG, et al. Electrophysiological, electroanatomical, and structural remodeling of the atria as consequences of sustained obesity. J Am Coll Cardiol. 2015;66(1):1-11. DOI: 10.1016/j.jacc.2015.04.058.

51. Scott LJr, Fender AC, Saljic A, et al. NLRP3 inflammasome is a key driver of obesity-induced atrial arrhythmias. Cardiovasc Res. 2021;117(7):1746-59. DOI: 10.1093/cvr/cvab024.

52. Джиоева О.Н., Тимофеев Ю.С., Метельская В.А. и др. Роль эпикардиальной жировой ткани в патогенезе хронического воспаления при сердечной недостаточности с сохраненной фракцией выброса. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2024;23(3):3928. DOI: 10.15829/1728-8800-2024-3928.


Об авторах

Ю. С. Тимофеев
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России
Россия

Тимофеев Юрий Сергеевич

Петроверигский пер., д. 10, стр. 3, Москва, 101990

ул. Долгоруковская, д. 4. Москва, 127006



В. А. Метельская
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава России; ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России
Россия

Метельская Виктория Алексеевна

Петроверигский пер., д. 10, стр. 3, Москва, 101990

Баррикадная ул., д. 2/1 стр. 1, Москва, 125993



Ш. М. Рахмонова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава России
Россия

Рахмонова Шахло Мухаммадюсуфовна

Петроверигский пер., д. 10, стр. 3, Москва, 101990



А. Л. Борисова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава России
Россия

Борисова Анна Львовна

Петроверигский пер., д. 10, стр. 3, Москва, 101990



О. Н. Джиоева
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России
Россия

Джиоева Ольга Николаевна

Петроверигский пер., д. 10, стр. 3, Москва, 101990

ул. Долгоруковская, д. 4. Москва, 127006



О. М. Драпкина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России
Россия

Драпкина Оксана Михайловна

Петроверигский пер., д. 10, стр. 3, Москва, 101990

ул. Долгоруковская, д. 4. Москва, 127006



Рецензия

Для цитирования:


Тимофеев Ю.С., Метельская В.А., Рахмонова Ш.М., Борисова А.Л., Джиоева О.Н., Драпкина О.М. Инфламмасомы — новый потенциальный биомаркер хронической сердечной недостаточности (обзор). Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии. 2026;22(1):52-59. https://doi.org/10.20996/1819-6446-2026-3220. EDN: PXNUVM

For citation:


Timofeev Yu.S., Metelskaya V.A., Rakhmonova Sh.M., Borisova A.L., Dzhioeva O.N., Drapkina O.M. Inflammasomes: a novel potential biomarker for chronic heart failure (review). Rational Pharmacotherapy in Cardiology. 2026;22(1):52-59. (In Russ.) https://doi.org/10.20996/1819-6446-2026-3220. EDN: PXNUVM

Просмотров: 99

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1819-6446 (Print)
ISSN 2225-3653 (Online)